實時定量 PCR 是一種使用熒光化學物質(zhì)測量 DNA 擴增反應中每個聚合酶鏈式反應 (PCR) 循環(huán)后產(chǎn)物總量的方法。通過內(nèi)參或外參方法對待測樣品中特定DNA序列進行定量分析的方法。
實時PCR是在PCR擴增過程中通過熒光信號實時檢測PCR過程。由于在PCR擴增的指數(shù)期內(nèi),模板的Ct值與模板的初始拷貝數(shù)之間存在線性關系,因此成為定量的依據(jù)。
所謂實時定量PCR技術是指在PCR反應體系中添加熒光基團,利用熒光信號的積累實時監(jiān)測整個PCR過程,最后通過標準品對未知模板進行定量分析的方法。曲線。
PCR反應體系中加入過量的SYBR熒光染料。 SYBR熒光染料特異性摻入DNA雙鏈后,發(fā)出熒光信號,而未摻入鏈中的SYBR染料分子不會發(fā)出任何熒光信號,從而保證了熒光信號的增加全同步隨著PCR產(chǎn)物的增加。
當探針完整時,報告基團發(fā)出的熒光信號被猝滅基團吸收;在 PCR 擴增過程中,Taq 酶的 5'-3' 核酸外切酶活性裂解并降解探針,形成報告熒光團和猝滅基團。將熒光基團分開,使熒光監(jiān)測系統(tǒng)能夠接收到熒光信號,即每擴增一條DNA鏈,就形成一個熒光分子,熒光信號的積累與DNA鏈的形成全同步。 PCR 產(chǎn)物。
熒光素標記的Taqman探針與模板DNA混合后,完成高溫變性、低溫復性、適宜溫度延伸的熱循環(huán),根據(jù)模板DNA互補的Taqman探針被切斷聚合酶鏈反應定律。熒光素在反應體系中呈游離態(tài),在特定光激發(fā)下發(fā)出熒光。隨著循環(huán)次數(shù)的增加,擴增的目的基因片段呈指數(shù)增長。通過實時檢測隨擴增變化而變化的相應熒光信號強度,獲得Ct值,同時以已知模板濃度的幾種標準品作為對照,計算樣品中目的基因的拷貝數(shù)可以得到待測試的。
Ct值(Cycle Threshold,循環(huán)閾值)的含義是:每個反應管內(nèi)熒光信號達到設定閾值時所經(jīng)歷的循環(huán)次數(shù)
PCR反應的前15個循環(huán)的熒光信號作為熒光背景信號,熒光閾值默認(default)設置為第3-15個循環(huán)的熒光信號標準差的10倍,即:閾值 = 10*SDcycle 3- 15
每個模板的Ct值與模板初始拷貝數(shù)的對數(shù)呈線性關系,公式如下。
Ct=-1/lg(1+Ex)*lgX0+lgN/lg(1+Ex) 初始拷貝數(shù)越高,Ct 值越低。使用已知初始拷貝數(shù)的標準品可以制作標準曲線,其中橫坐標表示初始拷貝數(shù)的對數(shù),縱坐標表示Ct值。因此,只要獲得未知樣品的Ct值,就可以從標準曲線計算出該樣品的起始拷貝數(shù)。
n為擴增反應的循環(huán)數(shù),X0為初始模板量,Ex為擴增效率,N為當熒光擴增信號達到閾值強度時擴增產(chǎn)物的量。
實時定量PCR中使用的熒光物質(zhì)可分為熒光探針和熒光染料兩類。原理簡述如下:
1. TaqMan熒光探針:在PCR擴增過程中,隨一對引物一起添加特異性熒光探針。探針是寡核苷酸,兩端都標記有報告熒光基團和猝滅劑。熒光團。當探針完整時,報告基團發(fā)出的熒光信號被猝滅基團吸收;在 PCR 擴增過程中,Taq 酶的 5'-3' 核酸外切酶活性裂解并降解探針,形成報告熒光團和猝滅基團。熒光基團分離,使熒光監(jiān)測系統(tǒng)能夠接收到熒光信號,即每擴增一條DNA鏈就形成一個熒光分子,熒光信號的積累與PCR的形成全同步產(chǎn)品。新型TaqMan-MGB探針使該技術能夠同時進行定量基因分析和基因突變(SNP)分析,有望成為基因診斷和個性化醫(yī)療分析的技術平臺。
2. SYBR熒光染料:在PCR反應體系中,加入過量的SYBR熒光染料,SYBR熒光染料非特異性摻入DNA雙鏈,并發(fā)出熒光信號,而未摻入DNA雙鏈的SYBR染料分子則發(fā)出熒光信號。鏈不會發(fā)射任何熒光。信號,從而保證熒光信號的增加與PCR產(chǎn)物的增加全同步。 SYBR 僅與雙鏈 DNA 結合,因此熔解曲線可用于確定 PCR 反應是否具有特異性。
3、分子信標:是一種莖環(huán)雙標記寡核苷酸探針,在5、3端形成約8個堿基的發(fā)夾結構。兩端的核酸序列互補配對,導致熒光團和猝滅基團非常接近并且不發(fā)出熒光。 PCR產(chǎn)物生成后,在退火過程中,分子信標的中間部分與特定的DNA序列配對,熒光基因和猝滅基因分離,產(chǎn)生熒光[1]。
1)內(nèi)參法:將定量的內(nèi)標和引物加入到不同的PCR反應管中,通過基因工程方法合成內(nèi)標。上游引物有熒光標記,下游引物沒有熒光標記。在擴增模板的同時,內(nèi)標也被擴增。 PCR產(chǎn)物中,由于內(nèi)標和目標模板的長度不同,可以通過電泳或高效液相分離兩者的擴增產(chǎn)物,并分別測定它們的熒光強度,內(nèi)標可以用作定量待檢測模板的對照。
2)競爭法:選擇含有突變克隆產(chǎn)生的新內(nèi)切酶位點的外源競爭模板。在同一反應管中,用同一對引物(其中一個引物帶有熒光標記)同時擴增待測樣品和競爭模板。擴增后,PCR產(chǎn)物用核酸內(nèi)切酶消化,競爭模板的產(chǎn)物被消化成兩個片段,而待測模板則不被酶切??梢酝ㄟ^電泳或高效液相分離兩種產(chǎn)物,并可以單獨測量熒光強度,根據(jù)已知模板推斷未知模板的初始拷貝數(shù)。
3)PCR-ELISA法:利用di高辛或生物素等標記引物,將擴增產(chǎn)物與固相板上的特異性探針結合,然后加入抗di高辛或生物素酶標抗體-辣根過氧化反應。底物酶結合,最后酶使底物顯色。常規(guī)的PCR-ELISA方法只是定性實驗。若加入內(nèi)標物制作標準曲線,也可達到定量檢測的目的。
由于傳統(tǒng)的定量方法是終點檢測,即PCR到達平臺期后進行檢測,而當PCR通過對數(shù)期擴增到達平臺期時,檢測重現(xiàn)性極差。同一個模板在96孔PCR機上重復96次,得到的結果相差很大,因此無法直接從終產(chǎn)物的量計算出起始模板的量。通過添加內(nèi)標可以部分消除最終產(chǎn)品定量造成的誤差。但即便如此,傳統(tǒng)的定量方法也只能算是半定量和粗略的定量方法。
如果在待測樣品中加入初始拷貝數(shù)已知的內(nèi)標,則PCR反應變成雙PCR,雙PCR反應中兩個模板之間存在干擾和競爭,特別是當內(nèi)標的初始拷貝數(shù)為已知的內(nèi)標時。兩個模板差異比較大的時候,這種競爭就會更加顯著。但由于待測樣品的初始拷貝數(shù)未知,因此無法添加適量的已知模板作為內(nèi)標。也正是因為這個原因,傳統(tǒng)的定量方法雖然增加了內(nèi)標,但仍然只是一種半定量方法。
實時熒光定量PCR技術有效解決了傳統(tǒng)定量僅終點檢測的局限性,實現(xiàn)每個循環(huán)檢測一次熒光信號強度,并記錄在計算機軟件中,通過計算Ct值對每個樣品,根據(jù)標準曲線獲得定量結果。因此,無內(nèi)標實時定量PCR基于兩個基礎:
1)Ct值的重現(xiàn)性 當PCR循環(huán)達到Ct值所在的循環(huán)數(shù)時,剛剛進入真正的指數(shù)擴增階段(對數(shù)階段)。此時,微小的誤差還沒有被放大,因此Ct值的重現(xiàn)性好。 ,即同一個模板在不同時間擴增或者在不同管中同時擴增,得到的Ct值是恒定的。
2)Ct值與起始模板的線性關系 由于Ct值與起始模板的對數(shù)之間存在線性關系,因此可以利用標準曲線來定量測定未知樣品。因此,實時熒光定量PCR是一種利用外標曲線的定量方法。方法。
與內(nèi)標法相比,外標曲線定量法是一種準確、可靠的科學方法。使用外標曲線的實時熒光定量PCR是迄今為止最準確、重現(xiàn)性好的定量方法。已得到世界的認可,廣泛應用于基因表達研究、轉基因研究、藥效評估、病原檢測等領域。
在實時PCR中,模板定量有兩種策略:相對定量和絕對定量。
各類肝炎、艾滋病、流感、肺結核、性病等傳染病的診斷及療效評價;地中海貧血、血友病、性別發(fā)育不良、智力低下綜合征、胎兒畸形的優(yōu)生學和產(chǎn)前檢查;腫瘤標志物和腫瘤基因檢測實現(xiàn)腫瘤疾病的診斷;基因檢測實現(xiàn)了遺傳病的診斷。
流感、新城疫、口蹄疫、豬瘟、沙門氏菌、大腸桿菌、胸膜肺炎放線桿菌、寄生蟲病等、炭疽桿菌。
乳制品企業(yè)中食品源性微生物、食品過敏原、轉基因生物、坂崎腸桿菌的檢測。
與醫(yī)學、農(nóng)牧業(yè)、生物學相關的分子生物學定量研究。
各級各類醫(yī)療機構、大專院校及科研院所、疾控中心、檢驗檢疫局、獸醫(yī)站、食品企業(yè)及乳品廠等。由于qPCR是病原基因核酸的實時定量檢測,因此
具有更多的特性。與化學發(fā)光、時間分辨率、蛋白芯片等免疫學方法相比具有優(yōu)勢。